УСКОРЕННОЕ ПОЛУЧЕНИЕ ОДНОГО ПОКОЛЕНИЯ ЛУКА ЗА ГОД ТЕХНОЛОГИЕЙ КУЛЬТУРЫ ЦВЕТОЧНЫХ БУТОНОВ IN VITRO

В.С. Романов, О.В. Романова, В.В. Логунова, М.М. Тареева

Аннотация


Лук репчатый (A. cepa L.) – многолетнее травянистое растение можно выращивать от семени до семени в двух- или трехлетней культуре. Ускорить создания его селекционных форм можно получением гаплоидных и удвоено-гаплоидных растений, а также одного поколения использованием регулируемых условий фитотрона с защищенным грунтом. Мы использовали коллекционный растительный материал лука. У семенных растений бутоны высаживали на полужидкую питательную среду и для формирования каллуса культивировали при 25°С в темноте. Для индукции побегообразования после формирования каллуса культивировали проростки на фильтровальных мостиках в пробирках с жидкой питательной безгормональной средой на свету интенсивностью 5-8 тыс. люкс и фотопериодом 18 часов. Развитые растеньица лука высаживали в горшочки со стерильной почвенной смесью, накрывали сверху перфорированным пластиковым стаканчиком и помещали в климатическую камеру при освещении 10-15 тыс. люкс. Растения-регенеранты в фазу 3-4 настоящих листьев пересаживали в грунт для адаптации к фитотрону, а затем в пленочную теплицу для возделывания по общепринятой технологии выращивания лука репчатого. По такой технологии культуры цветочных бутонов in vitro удалось вырастить за год одно поколение растений лука (от бутона до бутона). Время образования каллуса, формирования проростков и выращивания их на фильтровальных мостиках составило 120 суток. В условиях фитотрона растения выращивали 120 суток. В пленочной теплице 60 суток возделывали растения до формирования луковицы, стрелкование –30 суток, бутонизации и цветения – 30 суток. Созревание и подсушивание семян ещё 60 суток. Определена выравненность растений лука по морфологическим признакам луковицы в потомствах после самоопыления, полученных по технологии культуры цветочных бутонов in vitro. Эти растения являются исходным материалом для селекции лука репчатого.

Ключевые слова


лук репчатый, растение-регенерант, питательная среда, бутон, яровизация, стрелкование.

Полный текст:

PDF

Литература


Пивоваров ВФ, Ершов ИИ, Агафонов АФ. Луковые культуры. М.; 2001.

Кадиров УА. Ускоренный способ получения семян лука репчатого в условиях южного Узбекистана. Молодой ученый. 2018;26:83-6.

Ершов ИИ, Раджабов ФШ. Семеноводство репчатого лука. Картофель и овощи. 1968;7:21-3.

Мирзоев МШ. Беспересадочный способ выращивания семян лука репчатого во влажных субтропиках Азербайджана. В кн.: Селекция и семеноводства овощных и бахчевых культур. М.; 2000. С.151-4.

Bohanec B, Jakse M, Ihanb A, Javornik B. Studies of gynogenesis in onion (Allium cepa L.): induction procedures and genetic analysis of regenerants. Plant Sci. 1995;104:215-24.

Campion B, Bohanec B, Javornik B. Gynogenic lines of onion (Allium cepa L.): evidence of their homozygosity. Theor Appl Genet. 1995;91:598-602.

Musial K, Bohanec B, Przywara L. Embryological study on gynogenesis in onion (Allium cepa L.). Sex Plant Reprod. 2001;13: 335-341.

Sulistyaningsih E, Yamashita K, Tashiro Y. Haploid induction from F1 hybrids between CMS shallot with Allium galanthum cytoplasm and common onion by unpollinated flower culture. Euphytica. 2002;125:139-44.

Романова ОВ, Середин ТМ, Романов ВС. Гаплоидия на шнитт-луке (Allium schoenoprasum L.) через гиногенез. В кн.: Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и сельскохозяйственной микробиологии. М; 2020. С.:74-6.

Rabinowich HD, Currah L, eds. Allium Crop Science: Recent Advances. CABI.; 2002.

Musial K, Bohanec B, Jakse M, Przywara L. The development of onion (Allium cepa L.) embryo sacs in vitro and gynogenesis induction in relation to flower size. In Vitro Cell Dev Biol. Plant. 2005;41:446-52.

Bohanec B. Doubled haploids via gynogenesis. In: Advances in Haploid Productions in Higher Plants. Springer Science Business Media B.V.; 2009. P. 35-46.

Sulistyaningsih E, Aoyagi Y, Tashiro Y. Flower bud culture of shallot (Allium cepa L. Aggregatum group) with cytogenetic analysis of resulting gynogenic plants and somaclones. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2006;86:249-55.

Логунов АН, Тимин НИ. Методика ускоренного получения одного поколения лука за один год. Картофель и овощи. 2011;(1):16-7.

Романов ВС, Молчанова АВ, Павлова ОВ, Тареева ММ. Селекционная и биохимическая характеристика форм лука, созданных на основе межвидовой гибридизации. Овощи России. 2018;(6):23-5.

Попков ВА. Лук в условиях Республики Беларусь: Биология, агротехника, экономика. Гомель: ГГТУ им. П.О. Сухого: 2001.

Методика проведения испытаний на отличимость, однородность и стабильность лук репчатый (Allium cepa L.) и лук шалот (Allium ascalonicum L.). RTG/46/2, UPOV; 2000. С. 528-47.

Доспехов БА. Методика полевого опыта. М.: Агропромиздат, 1985. 351 с. References

Pivovarov VF, Yershov II, Agafonov AF. Lukovye Kultury. Moscow; 2001. (In Russ.)

Kadirov UA. An accelerated method of producing onion deeds in South Uzbekistan conditions. Molodoy Uchenui. 2018;26:83-6.

Yershov II, Radzhabov FSh. Onion seeds production. Kartofel i Ovoschi.1968;7:21-3.

Mirzoyev MSh. A method of onion seeds production without onion replanting in moist subtropics of Azerbaijan. In: Selektsiya i Semenovodstvo Ovoschnykh I Bakhchevykh Kultur. Moscow; 2000. P. 151-4.

Bohanec B, Jakse M, Ihanb A, Javornik B. Studies of gynogenesis in onion (Allium cepa L.): induction procedures and genetic analysis of regenerants. Plant Sci. 1995;104:215-24.

Campion B, Bohanec B, Javornik B. Gynogenic lines of onion (Allium cepa L.): evidence of their homozygosity. Theor Appl Genet. 1995;91:598-602.

Musial K, Bohanec B, Przywara L. Embryological study on gynogenesis in onion (Allium cepa L.). Sex Plant Reprod. 2001;13: 335-341.

Sulistyaningsih E, Yamashita K, Tashiro Y. Haploid induction from F1 hybrids between CMS shallot with Allium galanthum cytoplasm and common onion by unpollinated flower culture. Euphytica. 2002;125:139-44.

Romanova OV, Seredin TM, Romanov VS. Haploid state of chive (Allium schoenoprasum L.) via gynogenesis. Biotekhnologiya v Semenovodstve, Zhivotnovodstve i Selskokhoziaystvennoy Mikrobiologii. Moscow; 2000. P. 74-6

Rabinowich HD, Currah L, eds. Allium Crop Science: Recent Advances. CABI.; 2002.

Musial K, Bohanec B, Jakse M, Przywara L. The development of onion (Allium cepa L.) embryo sacs in vitro and gynogenesis induction in relation to flower size. In Vitro Cell Dev Biol. Plant. 2005;41:446-52.

Bohanec B. Doubled haploids via gynogenesis. In: Advances in Haploid Productions in Higher Plants. Springer Science Business Media B.V.; 2009. P. 35-46.

Sulistyaningsih E, Aoyagi Y, Tashiro Y. Flower bud culture of shallot (Allium cepa L. Aggregatum group) with cytogenetic analysis of resulting gynogenic plants and somaclones. Plant Cell Tiss Organ Cult. 2006;86:249-55.

Logunov AN, Timin NI. A technique for accelerated production of a single generation of onions during a single year. Katofel i Ovoschi. 2011;(1):16-7.

Romanov VS, Molchanova AV, Pavlova OV, Tapeyeva MM. Selection-related and biochemical characterization of onion forms obtained by interspecies hybridization. Ovoschi Rossii. 2018;(6):23-5.

Popkov VA. Luk v Usloviyakh Respubliki Belarus: Biologiya, Agrotekhnika, Tkonomika. Gomel: GGTU im. P.O. Sukhogo; 2001.

Anonimous. Metodika Provedeiya Ispytaniy na Otlichimost’, Odnorodnost’ i Stabilnost’ Luk Repachayi (Allium cepa L.) i Luk Shalot (Allium ascalonicum L.). RTG/46/2, UPOV; 2000. P. 528-47.

Dospekhov BA. Metodika Polevogo Opyta. Moscow: Agroproizdat$ 1985.




© ФОНД НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ "XXI ВЕК"