ПРАКТИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ИЗУЧЕНИЯ ИНДУЦИРОВАННОЙ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ К ФИТОФАГАМ

Т. Д. Черменская, М. О. Петрова, Е. А. Степанычева

Аннотация


В обзоре обобщены зарубежные и отечественные, включая собственные, исследования по оценке проявлений индуцированного иммунитета растений. Рассмотрены подходы к изучению феномена индуцированной устойчивости растений с учетом межвидовых химических взаимодействий в биоценозах между представителями разных трофических уровней, участие и роль конкретных химических соединений в механизмах этих взаимодействий. Дана оценка возможностей использовать такие механизмы для разработки приемов и средств защиты сельскохозяйственных растений. Описаны методы изучения индуцированной устойчивости растений к фитофагам в условиях лабораторного и полевого эксперимента, способы воздействия на растения биотрофами (преимущественно фитофагами) и химическими веществами для активации ответных реакций. Уделено внимание критериям проявления исследуемых реакций, техническим возможностям изучения поведения членистоногих, даны обобщенные сведения оценки индуцированных реакций растений к фитофагам по биохимическим показателям. Без всестороннего изучения индуцированной устойчивости использование индукторов иммунитета в защите растений будет ограниченным. Разработка методов индуцированной защиты растений в качестве основы для создания и применения соединений, стимулирующих выработку растением биологически активных веществ с репеллентной, детеррентной, антифидантной активностями перспективна для снижения пестицидной нагрузки, сохранения биоразнообразия и рационального использования природных ресурсов.


Ключевые слова


индуцированный иммунитет; семиохемики; элиситоры; защитные белки

Полный текст:

PDF

Как процитировать материал

Литература


Список русскоязычной литературы

1. Буров ВН, Петрова МО, Селицкая ОГ, Степанычева ЕА, Черменская ТД, Шамшев ИВ. Индуцированная устойчивость растений к фитофагам. М.: КМК; 2012.

2. Буров ВН, Петрова МО, Черменская ТД. К вопросу об ольфакторной ориентации оранжерейной белокрылки Trialeurodes vaporariorum (Homoptera: Aleyrodidae). Энтомол обозр. 2001;80(2):288-93.

3. Илларионов АИ, Деркач АА. Иммунологический метод защиты растений: современное состояние и перспективы его практического использования. Вестн Воронежского государственного аграрного ун-та. 2022;15(3)(74):65-78. DOI: 10.53914/issn2071-2243_2022_3_65

4. Кириллова ОС. Семиохимические взаимодействия и индуцированные защитные реакции в растениях огурца при повреждении фитофагами. Дисс…. канд. биол. наук. Санкт-Петербург: ФГБНУ ВИЗР; 2015.

5. Кириллова ОС. Особенности действия Иммуноцитофита на западного цветочного трипса при обработке огурца посевного. Вестн защиты растений. 2016;3(89):81-2.

6. Кириллова ОС, Раздобурдин ВА. Особенности внутри- и межвидовых взаимодействий оранжерейной белокрылки Trialeurodes vaporariorum и обыкновенного паутинного клеща Tetranychus urticae на огурце. Вестн защиты растений. 2020;103(4):241–6. DOI: 10.31993/2308-6459-2020-103-4-14258

7. Кириллова ОС, Селицкая ОГ. Циркон как иммуномодулятор устойчивости огурца к фитофагам. Вестн защиты растений. 2015;1(83):58–62.

8. Конарев АВ. Молекулярные аспекты иммунитета растений и их коэволюции с насекомыми. Биосфера. 2017;9(1):79-99. DOI: 10.24855/biosfera.v9i1.325

9. Конарев АВ. Пищеварительные гидролазы хлебных клопов: Свойства, значение и возможные пути ограничения их активности. Вестн защиты растений. 2020;103(2):65-86. DOI: 10.31993/2308-6459-2020-103-2-13279

10. Конарев АВ. РНК-интерференция в изучении функций генов у тлей и других полужесткокрылых и борьбе с их вредными представителями. Вестн защиты растений. 2023;106(1):26-48. DOI: 10.31993/2308-6459-2023-106-1-15625

11. Кунгурцева ОВ, Черменская ТД, Чакаева АШ. Фунгицидная активность экстрактов растений флоры Кыргызстана. Микол фитопатол. 2018;52(4):291-98. DOI: 10.1134/S0026364818040074

12. Марданшин ИС, Шпирная ИА, Пусенкова ЛИ. Перспектива использования ингибиторного барьера в селекции картофеля на устойчивость к колорадскому жуку. Аграр вестн Урала. 2022;02(217):2-11. DOI: 10.32417/1997-4868-2022-217-02-2-11

13. Овсянникова ЕИ, Гричанов ИЯ, Крохалёв РС, Николаева ЗВ, Крюкова АВ, Вендило НВ. Комплекс плодожорок в садовых агроценозах Северо-Запада России. Аграр науч журн. 2024;10:47-59. DOI: 10.28983/asj.y2024i10pp47-59

14. Петрова МО, Черменская ТД, Лепп НВ. Индуцированная устойчивость растений баклажана к оранжерейной белокрылке Trialeurodes vaporariorum Westw. Известия СПбГАУ. 2015;39:83-7.

15. Поликсенова ВД. Индуцированная устойчивость растений к патогенам и абиотическим стрессовым факторам (на примере томата). Вестн БГУ. Сер. 2. 2009;1:48-60.

16. Раздобурдин ВА, Кириллова ОС, Козлова ЕГ. Взаимодействие в системе огурец – паутинный клещ Tetranychus urticae Koch (Acarina, Tetranychidae) – клещеядная галлица Feltiella luboviae Fedotova et Kozlova (Diptera, Cecidomyiidae) на фоне применения этиларахидоната. Энтомол обозр. 2022;101(3):533-44. DOI: 10.31857/s0367144522030042

17. Рябчинская ТА, Зимина ТВ, Бобрешова ИЮ. Новый полифункциональный биологический препарат для повышения продуктивности и комплексной устойчивости картофеля к биотическим стрессам. Агрохимия. 2020;5:17-25. DOI: 10.31857/S0002188120050129

18. Степанычева ЕА, Петрова МО, Черменская ТД. Влияние иммуномодуляторов на поведение и развитие фитофагов. В кн.: Материалы VII международной научно-практической конференции «Агротехнический метод защиты растений от вредных организмов». Краснодар; 2015. С. 278-81.

19. Степанычева ЕА, Петрова МО, Черменская ТД. Биологическая активность эфирного масла Litsea cubeba и цитраля в отношении паутинного клеща Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Энтомол обозр. 2023;102(2):260-9. DOI: 10.31857/S0367144523020065

20. Степанычева ЕА, Петрова МО, Щеникова АВ, Черменская ТД. Семиохимические взаимодействия между фитофагами и фитопатогеном Pseudomonas syringae pv. tomato на томатах Solanum lycopersicum L. С-х биол. 2016;51(5):731-38. DOI: 10.15389/agrobiology.2016.5.731rus

21. Степанычева ЕА, Черменская ТД, Петрова МО, Щеникова АВ. Влияние иммуномодуляторов на устойчивость растений томата к вредителям защищенного грунта. В кн.: Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Индуцированный иммунитет сельскохозяйственных культур – важное направление в защите растений». Большие Вяземы, Московская область, 15-16 ноября 2006 г. Большие Вяземы - Санкт-Петербург; 2006. С. 42-4.

22. Степанычева ЕА, Черменская ТД, Петрова МО, Щеникова АВ, Буров ВН, Савельева ЕИ. Влияние насекомых-фитофагов с различным типом питания на индуцированную устойчивость растений томата. Евраз энтомол журн. 2007;6(1):19-24.

23. Финкина ЕИ, Мельникова ДН, Богданов ИВ, Овчинникова ТВ. Белки системы врожденного иммунитета растений, осуществляющие транспорт липидов: структура, функции и практическое применение. Acta Natur (русскоязычная версия). 2016;2(29):53-69.

24. Фролов АН, Грушевая ИВ, Конончук АГ. Современные типы ловушек для мониторинга чешуекрылых на примере кукурузного мотылька. СПб: Наукоемкие технологии; 2021.

25. Юрченко ОС, Селицкая ОГ, Буров ВН, Тютерев СЛ. Влияние обработок всходов огурца хитозансодержащими индукторами болезнеустойчивости на ольфакторные реакции калифорнийского трипса Frankliniella occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae) и хищного клопа Orius laevigatus (Fieber) (Heteroptera: Anthocoridae). Энтомол обозрение. 2004;83(4):808–15.

Общий список литературы / Reference List

1. Burov VN, Petrova MO, Selytskaya OG, Stepanycheva EA, Chermenskaya TD, Shamshev IV. [Induced plant resistance to phytophages]. Мoskow: KMK; 2012. (In Russ.)

2. Burov VN, Petrova MO, Chermenskaya TD. [On olfactory orientation of the greenhouse whitefly Trialeurodes vaporariorum (Homoptera: Aleyrodidae)]. Entomologicheskoe Obozreniye. 2001;80(2):288-93. (In Russ.)

3. Illarionov AI, Derkach AA. [Immunological method of plant protection: current status and prospects for its practical use]. Vestnik Voronezhskogo Gosudarstvennogo Agrarnogo Universiteta. 2022;15(3)(74):65-78. (In Russ.)

4. Kirillova OS. [Semiochemical interactions and induced defense responses in cucumber plants under phytophagous damage]. PhD Theses. Saint Petersburg: FGBNU VIZR; 2015. (In Russ.)

5. Kirillova OS. [Impact characteristics of Immunocitofit to western flower thrips (Frankliniella occidentalis)]. Vestnik Zashchiti Rasteniy. 2016;3(89):81-2. (In Russ.)

6. Kirillova OS, Razdoburdin VA. [Features of conspecific and heterospecific interactions of greenhouse whitefly Trialeurodes vaporariorum and spider mite Tetranychus urticae]. Vestnik Zashchiti rasteniy. 2020;103(4):241-6. (In Russ.) DOI: 10.31993/2308-6459-2020-103-4-14258

7. Kirillova OS, Selytskaya OG. [Zircon as an immunomodulator of cucumber resistance to phytophages]. Vestnik Zashchiti Rasteniy. 2015;1(83):58-62. (In Russ.)

8. Konarev AV. [Molecular aspects of plant immunity and their coevolution with insects]. Biosfera. 2017;9(1):79-99. (In Russ.)

9. Konarev AV. [Digestive hydrolases of wheat bugs: properties, significance and possible ways to limit their activity]. Vestnik Zashchiti Rasteniy. 2020;103(2):65-86. (In Russ.) DOI: 10.31993/2308-6459-2020-103-2-13279

10. Konarev AV. [RNA-interference in the study of gene functions in aphids and other hemipterans and the fight against their harmful representatives]. Vestnik Zashchiti Rasteniy. 2023;106(1):26-48. (In Russ.) DOI: 10.31993/2308-6459-2023-106-1-15625

11. Kungurtseva OV, Chermenskaya TD, Chakaeva ASh. [Fungicidal activity of plant extracts from Kyrgyzstan flora]. Mikologiya i Fitopatologiya. 2018;52(4):291-8. (In Russ.) DOI: 10.1134/S0026364818040074

12. Mardanshin IS, Shpirnaya IA, Pusenkova LI. [Prospects for using an inhibitory barrier in potato breeding for resistance to the Colorado potato beetle]. Agrarnyi Vestnik Urala. 2022;02(217):2-11. (In Russ.) DOI: 10.32417/1997-4868-2022-217-02-2-11

13. Ovsyannikova EI, Grichanov IYa, Krokhalyov RS, Nikolaeva ZV, Kryukova AV, Vendilo NV. [Complex of codling moths in orchard agrocenoses of North-West Russia]. Agrarniy Nauchniy Zhurnal. 2024;10:47-59. (In Russ.) DOI: 10.28983/asj.y2024i10pp47-59

14. Petrova MO, Chermenskaya TD, Lepp NV. [Induced resistance of eggplant plants to greenhouse whitefly Trialeurodes vaporariorum Westw.]. Izvestiya SPBGAU. 2015;39:83-7. (In Russ.)

15. Poliksenova VD. [Induced plant resistance to pathogens and abiotic stress factors (using tomato as an example)]. Vestnik BGU. Ser. 2. 2009;1:48-60. (In Russ.)

16. Razdoburdin VA, Kirillova OS, Kozlova EG. [Interactions in the system “cucumber plant – spider mite Tetranychus urticae Koch (Acarina, Tetranychidae) – predatory midge Feltiella luboviae Fedotova et Kozlova (Diptera, Cecidomyiidae)” treated with ethyl arachidonate]. Entmologicheskoye Obozreniye. 2022;101(3):533-44. (In Russ.) DOI: 10.31857/s0367144522030042

17. Riabchinskaya TA, Zimina TV, Bobreshova IYu. [New multifunctional biological preparation for increasing productivity and integrated resistance to biotic stresses]. Agrokhimiya. 2020;5:17-25. (In Russ.) DOI: 10.31857/S0002188120050129

18. Stepanycheva YeA, Petrova MO, Chermenskaya TD. [The influence of immunomodulators on the behavior and development of phytophages]. In: Materialy VII Mezhdunarodnoy Nauchno-Prakticheskoy Konferentsii “Agrotekhnicheskiy Metod Zashchity Rasteniy ot Vrednikh Organizmov”. Krasnodar; 2015. P.. 278-81. (In Russ.)

19. Stepanycheva YeA, Petrova MO, Chermenskaya TD. [Biological activity of the Litsea cubeba essential oil and citral against the two-spotted spider mite Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae)]. Entomologicheskoye Obozreniye. 2023;102(2):260-9. (In Russ.) DOI: 10.31857/S0367144523020065

20. Stepanycheva YeA, Petrova MO, Shchenikova AV, Chermenskaya TD. [Allelochemics: an interaction between phytophagеs and Pseudomonas syringae pv. tomato on tomato Solanum lycopersicum L. plants]. Selskokhoziaystvennaya Biologiya. 2016;51(5):731-8. (In Russ.) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.5.731rus

21. Stepanycheva YeA, Chermenskaya TD, Petrova MO, Shchenikova AV. [The influence of immunomodulators on the resistance of tomato plants to greenhouse pests]. In: Materialy Vserossiyskoy Nauchno-Prakticheskoy Konferentsii «Indutsirovanniy Immunitet Selskokhozyaistvennikh Kultur – Vazhnoye Napravleniye v Zashchite Rasteniy». Saint Peterburg; 2006. P. 42-4. (In Russ.)

22. Stepanycheva YeA, Chermenskaya TD, Petrova MO, Shchenikova AV, Burov VN, Savelieva YeI. [Influence of phytophagous insects with different types of feeding on induced resistance of tomato plants]. Yevraziatskiy Entomologicheskiy Zhurnal. 2007;6(1);19-24. (In Russ.)

23. Finkina YeI, Melnikova DN, Bogdanov IV, Ovchinnikova TV. [Proteins of the plant innate immune system that transport lipids: structure, functions and practical applications]. Acta Naturae (Russian Version). 2016;2(29):53-69. (In Russ.)

24. Frolov AN, Grushevaya IV, Kononchuk AG. Sovremennye Tipy Lovushek dlia Monitoringa Cheshuyekrylykh na Primere Kukuruznogo Motylka. Saint Petersburg: Naukoyemkiye Tekhnologii; 2021.

25. Yurchenko OS, Selitskaya OG, Burov VN, Tiuterev SL. [Effects of cucumber treatments by chitosan-containing elicitors on the olfactory response of the western flower thrips Frankliniella occidentalis Pergande (Thysanoptera, Thripidae) and a predatory bug Orius laevigatus (Fieber) (Heteroptera: Anthocoridae)]. Entmologicheskoye Obozreniye. 2004;83(4):808–15.

26. Abbasi A, Khaleghi A, Khadivi AN. The effect of salicylic acid on physiological and morphological traits of cucumber (Cucumis sativus L. cv. Dream). Gesunde Pflanzen. 2020;72(2):155-62. DOI: 10.1007/s10343-019-00496-0

27. Abdolahadi F, Mirmoayedi A, Seifikar M. Inhibition of digestive α-amylase from Eurygaster integriceps (Sunn pest) by a proteinaceous extract from wheat varieties Bezostaya, Gaspard and Darab. J Fund Appl Sci. 2016;8(2S):1759-70. DOI: 10.4314/jfas.v8i2s.433

28. Akbar SMD, Jaba J, Regode V, Kumar GS, Sharma HC. Plant protease inhibitors and their interactions with insect gut proteinases. In: The Biology of Plant-Insect Interactions. CRC Press; 2018. P. 1-47.

29. Ali J, Wei D, Mahamood M, Zhou F, King PJH, Zhou W, Shamsi IH. Exogenous Application of Methyl Salicylate Induces Defence in Brassica against Peach Potato Aphid Myzus persicae. Plants. 2023;12(9):1770. DOI: 10.3390/plants12091770

30. Ataide LM, Pappas ML, Schimmel BC, Lopez-Orenes A, Alba JM, Duarte MV, Pallini A, Schuurink RC, Kant MR. Induced plant-defenses suppress herbivore reproduction but also constrain predation of their offspring. Plant Sci. 2016;252:300-10. DOI: 10.1016/j.plantsci.2016.08.004

31. Bally J, McIntyre GJ, Doran RL, Lee K, Perez A, Jung H, Naim F, Larrinua IM, Narva KE, Waterhouse PM. In-plant protection against Helicoverpa armigera by production of long hpRNA in chloroplasts. Front Plant Sci. 2016;7:1453. DOI: 10.3389/fpls.2016.01453

32. de Bobadilla MF, Vitiello A, Erb M, Poelman EH. Plant defense strategies against attack by multiple herbivores. Trends Plant Sci. 2022;27(6):528-35. DOI: 10.1016/j.tplants.2021.12.010

33. Cruz-Estrada A, Ruiz-Sánchez E, Medina Baizabal IL, Balam-Uc E, Gamboa-Angulo M. Effect of Eugenia winzerlingii extracts on Bemisia tabaci and evaluation of its nursery propagation. Phyton. 2019;88(2):161-70. DOI: 10.32604/phyton.2019.05809

34. Darshanee HLC, Ren H, Ahmed N, Zhang Z, Liu YH, Liu TX. Volatile-mediated attraction of greenhouse whitefly Trialeurodes vaporariorum to tomato and eggplant. Front Plant Sci. 2017;8:1285. DOI: 10.3389/fpls.2017.01285

35. Farhoodi N, Kazzazi M, Hosseininaveh V, Arezi I. Inhibitory effect of proteinaceous seed extract of three Iranian wheat cultivars on Eurygaster integriceps (Sunn pest) digestive enzymes. Arch Phytopathol Plant Protect. 2019;52(15-16):1177-92. DOI: 10.1080/03235408.2019.1693886

36. Filgueiras CC, Martins AD, Pereira RV, Willett DS. The ecology of salicylic asid Signaling: Primary, secondary and tertiary effects with applications in agriculture. Int J Mol Sci. 2019;20(23):5851. DOI: 10.3390/ijms20235851

37. Ghorbel M, Brini F, Sharma A, Landi M. Role of jasmonic acid in plants: the molecular point of view. Plant Cell Rep. 2021;40(8):1471-94. DOI: 10.1007/s00299-021-02687-4

38. Haas J, Lozano ER, Haida KS, Mazaro SM, de Souza Vismara E, Poppy GM. Getting ready for battle: do cabbage seeds treated with jasmonic acid and chitosan affect chewing and sap‐feeding insects? Entomol Expt Appl. 2018;166(5):412-9. DOI: 10.1111/eea.12678

39. Hanaka A, Lechowski L, Mroczek-Zdyrska M, Strubińska J. Oxidative enzymes activity during abiotic and biotic stresses in Zea mays leaves and roots exposed to Cu, methyl jasmonate and Trigonotylus caelestialium. Physiol Mol Biol Plants. 2018;24(1):1-5. DOI: 10.1007/s12298-017-0479-y

40. Hassoon AS., Abduljabbar IA. Review on the role of salicylic acid in plants. In: Sustainable Crop Production. IntechOpen, 2020. DOI: 10.5772/intechopen.89107

41. He Y, Borrego EJ, Gorman Z, Huang PC, Kolomiets MV. Relative contribution of LOX10, green leaf volatiles and JA to wound-induced local and systemic oxylipin and hormone signature in Zea mays (maize). Phytochemistry. 2020;174:112334. DOI: 10.1016/j.phytochem.2020.112334

42. Hu L, Zhang K, Wu Z, Xu J, Erb M. Plant volatiles as regulators of plant defense and herbivore immunity: molecular mechanisms and unanswered questions. Curr Opin Insect Sci. 2021;44; 82-8. DOI: 10.1016/j.cois.2021.03.010

43. Huang XZ, Chen JY, Xiao HJ, Xiao YT, Wu J, Wu JX., Zhou JJ, Zhang YJ, Guo YY. Dynamic transcriptome analysis and volatile profiling of Gossypium hirsutum in response to the cotton bollworm Helicoverpa armigera. Sci Rep. 2015;5:11867. DOI: 10.1038/srep11867

44. Kallure GS, Kumari A, Shinde BA, Giri AP. Characterized constituents of insect herbivore oral secretions and their influence on the regulation of plant defenses. Phytochemistry. 2022;193:113008. DOI: 10.1016/j.phytochem.2021.113008

45. Kanjana N, Ahmed MA, Shen Z, Li Y, Zhang L. Optimization of the determination of volatile organic compounds in plant tissue and soil samples: Untargeted metabolomics of main active compounds. MethodsX. 2024;13:102914. DOI: 10.1016/j.mex.2024.102914

46. Kant MR, Ament K, Sabelis MW, Haring MA, Schuurink RC. Differential timing of spider mite-induced direct and indirect defenses in tomato plants. Plant Physiol. 2004;135(1): 483-95. DOI: 10.1104/pp.103.038315

47. Kaur H, Salh PK, Singh B. Role of defense enzymes and phenolics in resistance of wheat crop (Triticum aestivum L.) towards aphid complex. J Plant Interact. 2017;12(1):304-11. DOI: 10.1080/17429145.2017.1353653

48. Kessler A. The information landscape of plant constitutive and induced secondary metabolite production. Curr Opin Insect Sci. 2015;8:47-53. DOI: 10.1016/j.cois.2015.02.002

49. Lankinen Å, Abreha KB, Masini L, Ali A, Resjö S, Andreasson E. Plant immunity in natural populations and agricultural fields: Low presence of pathogenesis-related proteins in Solanum leaves. PLoS One. 2018;13(11):e0207253. DOI: 10.1371/journal.pone.0207253

50. Li D, Baldwin IT, Gaquerel E. Navigating natural variation in herbivory-induced secondary metabolism in coyote tobacco populations using MS/MS structural analysis. Proc Natl Acad Sci USA. 2015;112(30):E4147-55. DOI: 10.1073/pnas.1503106112

51. Lin D, Xu Y, Wu H, Liu X, Zhang L, Wang J, Rao Q. Plant defense responses induced by two herbivores and consequences for whitefly Bemisia tabaci. Front Physiol. 2019;10:346. DOI: 10.3389/fphys.2019.00346

52. Liu J, Chafi R, Legarrea S, Alba JM, Meijer T, Menken SBJ, Kant MR. Spider mites cause more damage to tomato in the dark when induced defenses arelLower. J Chem Ecol. 2020;46(7):631-41. DOI: 10.1007/s10886-020-01195-1

53. Lo MM, Benfodda Z, Molinié R, Meffre P. Volatile organic compounds emitted by flowers: Ecological roles, production by plants, extraction, and identification. Plants. 2024;13(3):417. DOI: 10.3390/plants13030417

54. Lu J, Li J, Ju H, Liu X, Erb M, Wang X, Lou Y. Contrasting effects of ethylene biosynthesis on induced plant resistance against a chewing and a piercing-sucking herbivore in rice. Mol Plant. 2014;7(11):1–13. DOI: 10.1093/mp/ssu085

55. Makhlouf L, El Fakhouri K, Kemal SA, Aasfar A, Meftah Kadmiri I, El Bouhssini M. Advances in analytical techniques for assessing volatile organic compounds in pulse crops: a comprehensive review. Front Hortic. 2024;3:1394041. DOI: 10.3389/fhort.2024.1394041

56. Malone SC, Weaver DK, Seipel TF, Menalled FD, Hofland ML, Runyon JB, Trowbridge AM. Herbivore-induced volatile emissions are altered by soil legacy effects in cereal cropping systems. Plant Soil. 2020;455:171-86. DOI: 10.1007/s11104-020-04674-2

57. Materić D, Bruhn D, Turner C, Morgan G, Mason N, Gauci V. Methods in plant foliar volatile organic compounds research. Appl Plant Sci. 2015;3(12):1500044. DOI: 10.3732/apps.1500044

58. Matsishina NV, Sobko OA, Ermak MV. Food as a factor determining the physiological state of populations of the phytophagous pests of agricultural crops. Vegetable Crops of Russia. 2024;5:84-90. DOI: 10.18619/2072-9146-2024-5-84-90

59. Mayer RT, Inbar M, Mckenzie CL, Shatters R, Borowicz V, Albrecht U, Powell CA, Doostdar H. Multitrophic interactions of the silverleaf whitefly, host plants, competing herbivores, and pathogens. Arch Insect Biochem Physiol. 2002;51(4):151-69. DOI: 10.1002/arch.10065

60. Meitei AL, Bhattacharjee M, Dhar S, Chowdhury N, Sharma R, Acharjee S, Sarmah BK. Activity of defense related enzymes and gene expression in pigeon pea (Cajanus cajan) due to feeding of Helicoverpa armigera larvae. J Plant Interact. 2018;13(1):231-8. DOI: 10.1080/17429145.2018.1466373

61. Moravčíková J, Ujvariová N, Žur I, Gálová Z, Gregorová Z, Zimová M, Boszorádová E, Matušíková I. Chitinase activities in wheat and its relative species. Agriculture (Poľnohospodárstvo). 2017;63(1):14-22. DOI: 10.1515/agri-2017-0002

62. Mostafa S, Wang Y, Zeng W, Jin B. Plant responses to herbivory, wounding, and infection. Int J Mol Sci. 2022;23(13):7031. DOI: 10.3390/ijms23137031

63. Nilsson AK, Fahlberg P, Johansson ON, Hamberg M, Andersson MX, Ellerström M. The activity of hydroperoxide lyase 1 regulates accumulation of galactolipids containing 12-oxo-phytodienoic acid in Arabidopsis. J Exp Bot. 2016;67(17):5133-44. DOI: 10.1093/jxb/erw278

64. Olanca B, Koksel H, Ozderen NT, Ozay DS. Determination of wheat bug (Eurygaster spp.) damage in durum wheat (Triticum durum L.) by electrophoresis and rapid visco analyser. J Cereal Sci. 2016;72:69-74. DOI: 10.1016/j.jcs.2016.10.001

65. Oz V, Erler F. Evaluation of oviposition deterrent activity of four oily substances against winterform females of pear psylla, Cacopsylla pyri. Bull Insectol. 2021;74(2): 285-90.

66. Park I, Schwarzländer M, Hinz HL, Schaffner U, Eigenbrode SD. A simple approach to evaluate behavioral responses of insect herbivores to olfactory and visual cues simultaneously: the double stacked y-tube device and portable volatile collection system. Arthropod-Plant Interact. 2019;13(1):139-49. DOI: 10.1007/s11829-018-9663-4

67. Paudel S, Lin PA, Foolad MR, Ali JG, Rajote EG, Felton GW. Induced plant defenses against herbivory in cultivated and wild tomato. J Chem Ecol. 2019;45(8):693-707. DOI: 10.1007/s10886-019-01090-4

68. Pavela R, Stepanycheva E, Shchenikova A, Chermenskaya T, Petrova M. Essential oils as prospective fumigants against Tetranychus urticae Koch. Ind Crops Prod. 2016;94:755-61. DOI: 10.1016/j.indcrop.2016.09.050

69. Pérez-Llorca M, Muñoz P, Müller M, Munné-Bosch S. Biosynthesis, metabolism and function of auxin, salicylic acid and melatonin in climacteric and non-climacteric fruits. Front Plant Sci. 2019;10:136. DOI: 10.3389/fpls.2019.00136

70. Quintana‐Rodriguez E, Morales‐Vargas AT, Molina‐Torres J, Ádame‐Alvarez RM, Acosta‐Gallegos JA, Heil M. Plant volatiles cause direct, induced and associational resistance in common bean to the fungal pathogen Colletotrichum lindemuthianum. J Ecol. 2015;103(1):250-60. DOI: 10.1111/1365-2745.12340

71. Rodriguez-Saona C, Crafts-Brandner SJ, Pare PW, Henneberry TJ. Exogenous methyl jasmonate induces volatile emissions in cotton plants. J Chem Ecol. 2001;27(4):679-95. DOI: 10.1023/a:1010393700918

72. Rose USR, Manukian A, Heath RR, Tumlinson JH. Volatile semiochemicals released from undamaged cotton leaves. A systemic response of living plants to caterpillar damage. Plant Physiol. 1996;111(2):487-95. DOI: 10.1104/pp.111.2.487

73. Saadati M, Toorchi M. The study of plant protein accumulation in gut of insect using proteomics technique: Wheat–sunn pest interaction. J Saudi Soc Agricult Sci. 2017;16(3):205-9. DOI: 10.1016/j.jssas.2015.06.005

74. Shahid I, Rizwan M, Mehnaz S. Identification and quantification of secondary metabolites by LC-MS from plant-associated Pseudomonas aurantiaca and Pseudomonas chlororaphis. Bio-protocol. 2018;8(2):e2702. DOI: 10.21769/BioProtoc.2702

75. Stout MJ, Fidantsef AL, Duffey SS, Bostock RM. Signal interactions in pathogen and insect attack: systemic plant-mediated interactions between pathogens and herbivores of the tomato, Lycopersicon esculentum. Physiol Mol Plant Pathol. 1999;54(3-4):115-30. DOI:10.1006/PMPP.1998.0193

76. Thakur N, Mundey JK, Upadhyay SK. RNAi – Implications in entomological research and pest control. In: RNA Interference; 2016. P. 341-70. DOI: 10.5772/61814

77. Thaler JS, Fidantsef AL, Bostock RM. Antagonism between jasmonate- and salicylate-mediated induced plant resistance: effects of concentration and timing of elicitation on defense-related proteins, herbivore, and pathogen performance in tomato. J Chem Ecol. 2002;28(6):1131-59. DOI: 10.1023/a:1016225515936

78. Thaler JS, Olsen EL, Kaplan I. Jasmonate-induced plant defenses and prey availability impact the preference and performance of an omnivorous stink bug, Podisus maculiventris. Arthropod-Plant Interact. 2015;9(2):141-8. DOI: 10.1007/s11829-015-9357-0

79. Thaler JS, Fidantsef AL, Duffey SS, Bostock RM. Trade-offs in plant defense against pathogens and herbivores: a field demonstration of chemical elicitors of induced resistance. J Chem Ecol. 1999;25(7):1597-1609. DOI: 10.1023/A:1020840900595

80. Tholl D, Hossain O, Weinhold A, Röse USR, Wei Q. Trends and applications in plant volatile sampling and analysis. TPJ. 2021;106(2):314-25. DOI: 10.1111/tpj.15176

81. Thompson MC, Feng H, Wuchty S, Wilson AC. The green peach aphid gut contains host plant microRNAs identified by comprehensive annotation of Brassica oleracea small RNA data. Sci Rep. 2019;9:18904. DOI: 10.1038/s41598-019-54488-1

82. Tian M, Xu L, Jiang J, Zhang S, Liu T, Xu Y. Host plant species of Bemisia tabaci affect orientational behavior of the ladybeetle Serangium japonicum and their implication for the biological control strategy of whiteflies. Insects. 2020;11(7):434. DOI: 10.3390/insects11070434

83. Timilsena BP, Mikó I. Know your insect: The structural backgrounds of regurgitation, a case study on Manduca sexta and Heliothis virescens (Lepidoptera: Sphingidae, Noctuidae). Res Ideas Outcom. 2017;3(6):e11997. DOI: 10.3897/rio.3.e11997

84. Tumlinson JH, Pare PW, Lewis WJ. Plant production of volatiles semiochemicals in response to insect-derived elicitors. In: Insect-plant interactions and induced plant defense. Novartis Foundation Symp 223. Chichester; 1999. P. 95-109.

85. Uesugi A, Morrell KA, Poelman EH, Raaijmakers CE, Kessler A. Modification of plant‐induced responses by an insect ecosystem engineer influences the colonization behaviour of subsequent shelter‐users. J Ecol. 2016;104(4):1096-105. DOI: 10.1111/1365-2745.12587

86. Vaccino P, Ingegno B, Pansa M, Copta T, Tavella L. Common wheat and cereal bug interactions: kernel quality depletion and immunodetection of damage. J Agric Sci. 2016;155(2):193-204. DOI: 10.1017/S0021859616000162

87. Van Butselaar T, van den Ackerveken G. Salicylic acid steers the growth-immunity tradeoff. Trends Plant Sci. 2020;25(6):566-76. DOI: 10.1016/j.tplants.2020.02.002

88. Van der Westhuizen A, Qian XM, Botha AM. Differential induction of apoplastic peroxidase and chitinase activities in susceptible and resistant wheat cultivars by Russian wheat aphid infestation. Plant Cell Rep. 1998;18(1-2):132-7. DOI: 10.1007/s002990050545

89. Wang W, Zhou P, Mo X, Hu L, Jin N, Chen X, Yu Z, Meng J, Erb M, Shang Z., Gatehouse AMR, Wu J, Lou Y. Induction of defense in cereals by 4-fluorophenoxyacetic acid suppresses insect pest populations and increases crop yields in the field. Proc Natl Acad Sci USA. 2020;117(22):12017-28. DOI: 10.1073/pnas.2003742117

90. Wang XW, Li P, Liu SS. Whitefly interactions with plants. Curr Opin Insect Sci. 2017;19;70-5. DOI: 10.1016/j.cois.2017.02.001

91. Wang Y, Mostafa S, Zeng W, Jin B. Function and mechanism of jasmonic acid in plant responses to abiotic and biotic stresses. Int J Mol Sci. 2021;22(16):8568. DOI: 10.3390/ijms22168568

92. Weeks ENI, Logan JG, Birkett MA, Caulfield JC, Gezan SA, Welham SJ, Brugman VA, Pickett JA, Cameron MM. Electrophysiologically and behaviourally active semiochemicals identified from bed bug refuge substrate. Sci Rep. 2020;10(1):1-14. DOI: 10.1038/s41598-020-61368-6

93. Wu B, Chun E, Xie R, Knox GW, Gu M, Qin H. Real-time feeding behavior monitoring by electrical penetration graph rapidly reveals host plant susceptibility to crapemyrtle bark scale (Hemiptera: Eriococcidae). Insects. 2022:13(6):495. DOI: 10.3390/insects13060495

94. Yang L, Nuerbiye A, Cheng P, Wang JH, Li H. Analysis of floral volatile components and antioxidant activity of different varieties of Chrysanthemum morifolium. Molecules. 2017;22(10):1790. DOI:10.3390/molecules22101790

95. Yu X, Zhang W, Zhang Y, Zhang X, Lang D, Zhang X. The roles of methyl jasmonate to stress in plants. Functional Plant Biol. 2019;46(3):197-212. DOI: 10.1071/FP18106

96. Zhang G, Zhao F, Chen L, Pan Y, Sun L, Bao N, Zhang T, Cui CX, Qiu Z, Zhang Y, Li Y, Lin X. Jasmonate-mediated wound signalling promotes plant regeneration. Nat Plants. 2019;5(5):491-7. DOI: 10.1038/s41477-019-0408-x

97. Zhang W, Hu Y, Liu J, Wang H, Wei J, Sun P, Wu L, Zheng H. Progress of ethylene action mechanism and its application on plant type formation in crops. Saud J Biol Sci. 2020;27(6):1667-73. DOI: 10.1016/j.sjbs.2019.12.038

98. Zhao H, Sun X, Xue M, Zhang X, Li Q. Antioxidant enzyme responses induced by whiteflies in tobacco plants in defense against aphids: Catalase may play a dominant role. PLoS One. 2016;11(10):e0165454. DOI: 10.1371/journal.pone.0165454

99. Zhukovskaya MI, Grushevaya IV, Miltsen AA, Selitskaya OG, Shchenikova AV, Frolov AN, Tóth M. To attract a moth: wind tunnel and field testing of plant odor and light stimuli and their combination for Ostrinia nubilalis. Acta Phytopathol Entomol Hun. 2024;59(1):108-20. DOI: 10.1556/038.2024.00197




DOI: http://dx.doi.org/10.24855/biosfera.v18i1.1029

EDN: https://www.elibrary.ru/item.asp?edn=ILWARN

© ФОНД НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ "XXI ВЕК"